α-葡萄糖苷酶（α-Glucosidase, α-GC）試劑盒說明書
分光光度法 50 管/24 樣
正式測定前務必取2-3 個預期差異的樣本做預測定
測定意義：
α-GC(EC 3.2.1.20)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中，催化水解芳基或烴基與糖
基之間的α-糖苷鍵生成葡萄糖，不僅與細胞壁的松弛或加固有關，而且與細胞識別和一些
信號分子產生密切相關。
測定原理：
α-GC 分解對-硝基苯-α-D 吡喃葡萄糖苷生成對-硝基苯酚，后者在400nm 有zui大吸收峰，通
過測定吸光值升高速率來計算α-GC 活性。
自備用品：
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸
餾水。
試劑組成和配制：
提取液：液體50mL×1 瓶，4℃保存。
試劑一：粉劑×2 瓶，-20℃保存；臨用前每瓶加入10mL 蒸餾水，充分溶解備用；用不完的
試劑仍-20℃保存。
試劑二：液體25mL×1 瓶，4℃保存。
試劑三：液體50mL×1 瓶，4℃保存。
粗酶液提?。?br />1、細菌或培養(yǎng)細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數(shù)量
（104 個）：提取液體積（mL）為500~1000：1 的比例（建議500 萬細菌或細胞加入1mL 提
取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30 次）；
15000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2、組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10 的比例（建議稱取約0.1g 組織，
加入1mL 提取液），進行冰浴勻漿。15000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
測定步驟：
1、 分光光度計預熱30min 以上，調節(jié)波長至400nm，蒸餾水調零。
2、加樣表
試劑名稱（μL） 測定管 對照管
試劑一 400
試劑二 500 500
樣本 100 100
充分混勻，放入37℃準確水浴30min 后，立即放入95℃水浴5min（蓋緊，以防止
水分散失），流水冷卻后充分混勻（以保證濃度不變）
試劑一 400
充分混勻，8000g，4℃，離心5min，取上清液
上清液 500 500
試劑三 1000 1000
充分混勻，室溫靜置2min 后， 400nm 處測定吸光值A，計算ΔA=A 測定管-A 對照管。每
個測定管需設一個對照管。
α-GC 活力計算：
標準條件下測定的回歸方程為y =0.00543x -0.0027；x 為標準品濃度（nmol/mL），y 為吸光
值。
（1）按樣本蛋白濃度計算：
單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘產生1nmol 對-硝基苯酚定義為一個酶活力單位。
α-GC 活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反總]÷(V 樣×Cpr)÷T
=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr
需要另外測定，建議使用本公司BCA 蛋白質含量測定試劑盒。
（2）按樣本鮮重計算：
單位的定義：每g 組織每分鐘產生1nmol 對-硝基苯酚定義為一個酶活力單位。
α-GC 活力(nmol/min /g 鮮重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反總]÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T
=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W
（3）按細菌或細胞密度計算：
單位的定義：每1 萬個細菌或細胞每分鐘產生1nmol 對-硝基苯酚定義為一個酶活力單位。
α-GC 活力(nmol/min /104 cell)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V 反總]÷(500×V 樣÷V 樣總)÷T
=0.123×(ΔA +0.0027)
V 反總：反應體系總體積，1mL；V 樣：加入反應體系中樣本體積，0.1mL；V 樣總：加入
提取液體積，1mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g； 500：細胞或細菌
總數(shù)，500 萬；T：反應時間，30min。